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产品名称 | Osteocyte Differentiation Tool |
别称 | |
形态特征 | |
特征特性 | 试剂 |
生长特性 | |
主要用途 | 当以 18,000 个活细胞/cm2 的推荐密度铺板在 6 孔组织培养形式中时,骨细胞分化工具可提供足够的培养基来分化约 100 万个细胞。 |
培养条件 | |
培养基 | |
使用方法 | 不需要抗菌剂和酚红,但如果需要,可以在使用前将其添加到骨细胞分化工具中。表 1 总结了添加到骨细胞分化工具中的每种可选成分的推荐体积。 表 1. 每 100 ml 培养基可选添加抗菌剂/抗真菌剂和酚红 成分 体积 最终浓度 庆大霉素-两性霉素 B 溶液 0.1 mL 庆大霉素: 10 µg/mL 两性霉素 B:0.25 µg/mL 青霉素-链霉素-两性霉素 B 溶液 0.1 mL 青霉素:10 单位/mL 链霉素:10 µg/mL 两性霉素 B:25 ng/mL 酚红*** 0.1 mL 33 µM ** *请注意,使用酚红可能会增强和加速骨细胞分化过程中钙沉积的速度。准备用于骨细胞分化的细胞 按照脂肪源间充质干细胞 (ATCC PCS-500-011) 生长的说明进行操作。在开始骨细胞分化之前,细胞传代不要超过四 (4) 次。当细胞达到 70%-80% 汇合时,将其以 18,000 个活细胞/cm2 的密度传代到组织培养板中。根据所使用的组织培养板调整细胞数量和培养基体积。示例:对于表面积为 9.5 cm2/孔的 6 孔组织培养板,向每个含有 2 mL 间充质干细胞基础培养基 (ATCC® PCS-500-030) 的孔中添加总共 171,000 个活细胞,并补充间充质干细胞生长试剂盒 – 低血清 (ATCC® PCS-500-040) 组件。孵育前轻轻地来回摇晃培养板,使细胞均匀分布。不要旋转。在开始骨细胞分化之前,将细胞在 37°C、5% CO2 下孵育 48 小时。骨细胞分化程序 将制备的脂肪源间充质干细胞孵育 48 小时(如上所述)后,在水浴中将骨细胞分化工具预热至 37°C。将一瓶 D-PBS (ATCC 30-2200) 恢复至室温。从培养箱中取出准备好的脂肪源间充质干细胞,并小心地从每个孔中吸出培养基。向每个孔中轻轻添加 2 mL 室温 D-PBS (ATCC 30-2200),然后从孔中吸出 PBS 冲洗液,同时小心不要干扰细胞,从而冲洗细胞。将 2 mL 预热的骨细胞分化工具添加到每个孔中。 (将剩余的骨细胞分化工具储存在黑暗中2°C-8°C以备后用)。在更新培养基之前,将细胞在 37°C、5% CO2 下孵育 3-4 天。准备好更新培养基时,从存储中取出骨细胞分化工具并将所需体积转移到无菌管中。 (对于完整的 6 孔板,该体积为 12 mL)。将转移的骨细胞分化工具等份在水浴中加热至 37°C。从每个含有细胞的孔中除去除 1 mL 之外的所有旧介质。重要提示:在此步骤或任何后续步骤中,请勿在抽吸过程中倾斜板或以其他方式将单层暴露于空气中。将 2 mL 新鲜的、预热的骨细胞分化工具轻轻移至孔的一侧,以免干扰单层或积累的钙晶体。 (这使得每个孔中的最终体积达到 3 mL)。注意:分化细胞的单层处于张力之下并且极其脆弱。细胞很容易从板上脱落,必须小心处理。每 3-4 天重复步骤 6 至 10,直到细胞接触骨细胞分化工具总共 19 天。根据实验设计,细胞可用于骨细胞分化的任何阶段。为了确认钙积累,可以固定细胞并用茜素红(未提供)染色。注意:如果观察到单层边缘卷曲,细胞将在 24-48 小时内从组织培养板上脱离,应立即使用。 |
传代方法 | |
规格 | 100毫升 |
保存说明 | -20°C 或更低 |
注意事项 | 更多信息请前往ATCC官网获取 |
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