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分子实验笔记13:Gibson Assembly 克隆(Gibson Assembly Cloning)

来源:武汉市灰藻生物科技有限公司   浏览量:28   发布时间:2026-03-25 21:17:06

引言(Introduction)

2009年,J. Craig Venter研究所的Daniel Gibson博士及其同事开发了一种新颖的方法,用于高效组装多个线性DNA片段(Gibson et al., 2009)。

无论片段长度或末端兼容性如何,多个具有重叠序列的DNA片段均可在**单管、等温反应**(single isothermal reaction)中一步拼接。

该方法利用三种不同酶的协同作用,最终产物为**完全连接的双链DNA分子**。这一技术已被证明是构建质粒的高效手段,现已被分子生物学家广泛采用。

为何选择Gibson克隆?(Why Gibson Cloning?)

  • 无需特定限制性酶切位点(restriction sites):可连接几乎任意两个DNA片段,不受序列限制;
  • 无缝连接(No scar):拼接处无额外碱基残留;
  • 步骤简便:单管反应,操作流程短;
  • 多片段同步组装:可一次性连接多个DNA片段。

图1:Gibson 克隆

Gibson 克隆

操作流程(Procedure)

  1. 设计质粒并订购引物(参见下方示意图)
    设计时需明确最终质粒由哪些DNA片段拼接而成。相邻片段末端应包含**相同的重叠序列**(如图中序列A和B)。这些重叠区可通过PCR引入:引物5'端包含与相邻片段匹配的序列,3'端则与目标模板退火。
    Gibson 克隆


  1. 通过PCR扩增各DNA片段


Gibson 克隆

图3:通过PCR扩增各DNA片段

  1. 琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物,确认大小与产量。若存在明显非特异条带,需进行凝胶纯化;若产物单一,可直接使用PCR纯化产物,甚至未经纯化的PCR反应液(raw PCR mix)也可用于组装以节省时间。
  2. 在冰上配制Gibson Assembly反应体系,加入各DNA片段。
  3. 将反应产物转化至感受态细菌,并通过限制性酶切筛选正确重组质粒。
  4. 对最终质粒的关键区域进行测序验证,尤其是各组装片段的连接处(seams)。

小技巧(Tips and Troubleshooting)

  1. 使用寡核苷酸“缝合”片段(“Stitching” fragments together using oligos)
  2. 单次反应可组装的片段数量

参考文献

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— 武汉市灰藻生物科技有限公司团队敬上

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更新日期:2026-02-27

编制人:磊子

审稿人:小藻